期刊文献+

标本保存温度、时间和不同采血管对核酸检测结果的影响 被引量:22

下载PDF
导出
摘要 目的验证不同真空采血管、保存温度、时间等对核酸检测(NAT)结果的影响,为NAT检测的采血管选取、过程控制、检测策略等提供数据支持。方法进行3个试验:1)标本保存温度、离心前保存时间及采血管对NAT联检试验结果的影响:将含HIV-1(150 IU/ml)或HCV(60 IU/ml)或HBV(50 IU/ml)的弱阳性标本按照保存温度分为30℃组、4℃组,之后依据标本离心前的保存时间不同分为4 h,6 h,8 h,10 h,12 h,24 h组,再依据采血管生产厂家不同分为A、B、C组,对所有标本进行NAT联检试验,利用卡方统计分析各因素对NAT联检试验结果的影响;2)标本保存时间、采血管对NAT鉴别试验结果的影响:将含HIV-1(150 IU/ml)或HCV(60 IU/ml)或HBV(50 IU/ml)的弱阳性标本按照保存时间不同分为0 d、1 d、2 d、3 d、4 d、5 d、6 d、7 d组,再依据采血管不同分为采血管A、B、C组,对所有标本进行NAT鉴别试验,利用卡方统计分析标本保存时间、采血管对NAT鉴别试验结果的影响;3)保存时间对HCV阳性标本NAT定量结果的影响:选取9份浓度范围在1.04×102IU/ml~4.86×103IU/ml之间的弱阳性标本,依据标本在4℃保存时间的长短不同,分为0 d、1 d、2 d、3 d、4 d、5 d、6 d、7 d组,进行定量HCVRNA检测,分析4℃保存条件下保存时间对血浆中HCV RNA浓度的影响。结果试验1:对于全血标本,4℃或30℃的保存温度,4~24 h的离心前保存时间以及采用不同的采血管对弱阳性标本NAT检出率的影响差异均无统计学意义(P>0.05)。试验2:在4℃保存条件下,采用A采血管保存含HIV-1(150 IU/ml)的弱阳性标本0~7 d,保存后d 3,d 4、d 5、d 6、d 7弱阳性标本的NAT检出率与0 d相比,差异具有统计学意义(P<0.01);采用B采血管保存含HBV(50 IU/ml)的弱阳性标本0~7 d,保存后d 3和d 7此标本的NAT检出率与保存前相比差异有统计学意义(P<0.01);其余各组标本的NAT检出率与保存前相比差异没有统计学意义;试验3:9份HCV�
出处 《中国输血杂志》 CAS CSCD 北大核心 2012年第6期530-533,共4页 Chinese Journal of Blood Transfusion
  • 相关文献

参考文献14

  • 1Damen M, Sillekens P,Sjerps M, et al. Stability of hepatitis C virus RNA during specimen handling and storage prior to NASBA ampli- fication. Journal of virological methods, 1998,72 (2), 175-184. 被引量:1
  • 2Ginoechio CC, Wang XP, Kaplan MH, et al. Effects of specimen collection ,processing ,and storage conditions on stability of human immunodeficiency virus type 1 RNA levels in plasma HIV-1 RNA levels were stable for up to 30 h after collection when stored at ei- ther room temperature. Microbiology, 1997,35 ( 11 ) ,2886-2893. 被引量:1
  • 3Kirstein LM, Mellors JW, Rinaldo CR, et al. Effects of anticoagu- lant, processing delay, and assay method ( branched DNA versus re- verse transcriptase PCR) on measurement of human immunodefi- ciency virus type 1 RNA levels in plasma. Journal of clinical micro- biology, 1999,37 ( 8 ), 2428 -2433. 被引量:1
  • 4Sebire K, McGravin K,Land S, et al. Stability of human immunode- ficiency virus RNA as measured by a commercial PCR based as-say. J Clin Mierobiol,1998,36(2) :493-498. 被引量:1
  • 5Krajden M, Comandor L, Rifkin O, et al. Assessent of hepatitis B vi- rus DNA stability in serum by the Chiron Quantiplex branched DNA assay. J Clin Microbiol,1998,36(2) :382-356. 被引量:1
  • 6Cardoso M, Koerner K, Hinz W, et al. Hepatitis C virus stability:the issue! Vox Sang,1999,76(2) :124-127. 被引量:1
  • 7Gessoni G, Barin P, Valverde S, et al. Biological qualification of blood units : considerations about the effects of sample' s handling and storage on stability of nucleic acids. Transfusion and apheresis science:official journal of the World Apheresis Association:official journal of the European Society for Haemapheresis, 2004,30 ( 3 ), 197-203. 被引量:1
  • 8Busch MP, Wilber JC, Johnson P, et al. Impact of specimen han- dling and storage on detection of hepatitis C virus RNA. Transfusion, 1992,32 (5) :420-425. 被引量:1
  • 9Sener K, Yapar M, Bedir O, et al. Stability of hepatitis C virus RNA in blood samples by TaqMan real-time PCR. J Clin Lab Anal, 2010,24(3) :134-138. 被引量:1
  • 10Jos6 M, Gajardo R, Juan I. Jorquera Stability of HCV, HIV-1 and HBV nucleic acids in plasma samples under long-term storage. Biologlcals ,2005,33 ( 1 ) :9-16. 被引量:1

同被引文献153

引证文献22

二级引证文献116

相关作者

内容加载中请稍等...

相关机构

内容加载中请稍等...

相关主题

内容加载中请稍等...

浏览历史

内容加载中请稍等...
;
使用帮助 返回顶部