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Shortening the sgRNA-DNA interface enables SpCas9 and eSpCas9(1.1)to nick the target DNA strand 被引量:4
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作者 Rong Fan Zhuangzhuang Chai +7 位作者 Sinian Xing Kunling Chen Fengti Qiu Tuanyao Chai Jin-Long Qiu Zhengbin Zhang Huawei Zhang Caixia Gao 《Science China(Life Sciences)》 SCIE CAS CSCD 2020年第11期1619-1630,共12页
The length of the sgRNA-DNA complementary sequence is a key factor influencing the cleavage activity of Streptococcus pyogenes Cas9(SpCas9)and its variants.The detailed mechanism remains unknown.Here,based on in vitro... The length of the sgRNA-DNA complementary sequence is a key factor influencing the cleavage activity of Streptococcus pyogenes Cas9(SpCas9)and its variants.The detailed mechanism remains unknown.Here,based on in vitro cleavage assays and base editing analysis,we demonstrate that reducing the length of this complementary region can confer nickase activity on SpCas9 and eSpCas9(1.1).We also show that these nicks are made on the target DNA strand.These properties encouraged us to develop a dual-functional system that simultaneously carries out double-strand DNA cleavage and C-to-T base conversions at separate targets.This system provides a novel tool for achieving trait stacking in plants. 展开更多
关键词 SpCas9 eSpCas9(1.1) truncated spacer DSB nickase co-editing
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Nickase-dependent isothermal DNA amplification 被引量:1
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作者 Yan He Tao Jiang 《Advances in Bioscience and Biotechnology》 2013年第4期539-542,共4页
We developed a nicking endonuclease dependent DNA amplification (NDA), using Nt.BstNBI to catalyze single-stranded nick on double-stranded DNA, and Bst DNA polymerase to make extension while sealing the nick and displ... We developed a nicking endonuclease dependent DNA amplification (NDA), using Nt.BstNBI to catalyze single-stranded nick on double-stranded DNA, and Bst DNA polymerase to make extension while sealing the nick and displacing the downstream strand. The displaced single-stranded DNA thereby serves as template for primers hybridization and extension, resulting in exponential synthesis of target DNA under isothermal condition. Over 105 folds target DNA amplification can be achieved in 30 minutes, generating DNA product suitable for both diagnosis and DNA cloning. This NDA strategy does not require thermal cycling or prerequisite nucleotides modification, making it suitable for application in the field and at the point-of-care. 展开更多
关键词 DNA AMPLIFICATION DNA POLYMERASE ISOTHERMAL nickase STRAND DISPLACEMENT
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缺口酶Cas9 D10A和Cas9 H840A在大肠杆菌基因组编辑中的应用
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作者 韦佳妤 吴方 《基因组学与应用生物学》 CAS CSCD 北大核心 2022年第8期1677-1691,共15页
目前Ⅱ型CRISPR/Cas9工具被广泛应用于基因组编辑中,利用CRISPR/Cas9基因组编辑技术对大肠杆菌(Escherichia coli)基因组进行编辑,可应用于代谢工程及细菌耐药性等研究领域中。利用单缺口核酸酶Cas9 nickase(Cas9n)工具对宿主细胞基因... 目前Ⅱ型CRISPR/Cas9工具被广泛应用于基因组编辑中,利用CRISPR/Cas9基因组编辑技术对大肠杆菌(Escherichia coli)基因组进行编辑,可应用于代谢工程及细菌耐药性等研究领域中。利用单缺口核酸酶Cas9 nickase(Cas9n)工具对宿主细胞基因进行修饰,可降低由于双链断裂对宿主带来的毒性。但目前利用CRISPR/Cas9n对大肠杆菌基因组编辑的研究较少,不利于缺口酶Cas9 D10A和Cas9 H840A在大肠杆菌基因组编辑的应用。本研究在前人报道的细菌双质粒Cas9基因编辑系统(pCas/pTarget)基础上,通过分子突变的方法构建缺口酶Cas9突变体质粒pCas-D10A和pCas-H840A,以及携带修复模板或无修复模板的靶向大肠杆菌sseA基因的质粒pTargetT-△sseA(993 bp)和pTargetT-△sseA,系统研究了两种缺口酶编辑大肠杆菌内源性基因sseA的有效性和效率。在稳定表达pCas质粒的MG1655菌株中转入携带修复模板的pTargetT-△sseA(993 bp)质粒,通过菌落PCR及DNA测序方法验证基因编辑的有效性和效率,同时用醋酸铅试纸生化方法对敲除sseA基因的菌株进行功能验证。同时,将不含修复模板的pTargetT-△sseA质粒转入含有pCas的MG1655菌株中,通过平板菌落计数检测编辑效率。实验结果表明,在有修复模板和无修复模板两种系统中,Cas9 D10A和Cas9 H840A均可以编辑大肠杆菌内源性基因sseA,两者编辑效率基本一致,但都低于Cas9-WT的编辑效率。相对于野生型Cas9、Cas9 D10A或Cas9 H840A编辑大肠杆菌基因组时具有更小的细菌毒性。本研究为后续发展大肠杆菌的基因组编辑技术提供了一定的研究基础和新的研究思路。 展开更多
关键词 CRISPR/Cas9n 大肠杆菌 基因编辑 sseA 缺口酶
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敲除SOSSB1、SOSSB2和SOSSC基因稳定HeLa细胞株的构建
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作者 孙瑜 陈红霞 +6 位作者 齐永 李素芹 沈万鹏 饶继先 李佳萌 李晓玲 李越希 《中国生物制品学杂志》 CAS CSCD 2018年第11期1197-1200,1206,共5页
目的构建SOSSB1、SOSSB2和SOSSC基因敲除的稳定HeLa细胞株。方法分别设计并合成SOSSB1、SOSSB2和SOSSC亚基的两对靶向基因特定外显子的A、B两个单导向核酸(single guide RNA,sgRNA)及其互补链,与含BbsⅠ黏性末端的PX462载体连接,构建重... 目的构建SOSSB1、SOSSB2和SOSSC基因敲除的稳定HeLa细胞株。方法分别设计并合成SOSSB1、SOSSB2和SOSSC亚基的两对靶向基因特定外显子的A、B两个单导向核酸(single guide RNA,sgRNA)及其互补链,与含BbsⅠ黏性末端的PX462载体连接,构建重组质粒。重组质粒经酶切和测序鉴定正确后,分别转染至HeLa细胞,用2μg/mL的嘌呤霉素培养筛选出稳定HeLa细胞。采用Western blot法对敲除效果进行鉴定。结果 A、B sgRNA均成功插入至PX462载体,重组质粒经酶切和测序鉴定,证明构建正确。Western blot结果表明,筛选出的SOSSB1、SOSSB2和SOSSC基因敲除稳定HeLa细胞株分别不表达SOSSB1、SOSSB2、SOSSC蛋白。结论成功构建了SOSSB1、SOSSB2和SOSSC基因敲除的稳定HeLa细胞株。 展开更多
关键词 SOSS基因 基因敲除 HELA细胞株 CRISPR/Cas9n双切口酶
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